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应用实例：

六、小鼠心脏微血管内皮细胞（植块法）

简述：约1月龄小鼠，麻醉固定后，开胸减去心脏，放入D-HANKS缓冲液中，冲洗两遍，去除大血管，左右心房及右心室和室间隔，保留左心室肌。去除内、外膜，剪碎心室肌至1mm³左右的小块儿，滴加1ml胎牛血清，均匀接种于10cm培养皿中，，放入37℃， 5% CO₂培养箱中培养；4小时后，添加7.5ml含有20%FBS的高糖DMEM培养基，继续培养，约48小时后有细胞游离出。

七、家兔阴茎海绵体平滑肌细胞（消化后植块法）

简述：新鲜阴茎标本立刻在0 ～4 ℃Hanks 缓冲液及含少量DMEM 的液体中清洗,锋利刀片尽快切除皮肤、白膜、尿道及尿道海绵体等组织，将阴茎海绵体组织块移入含DMEM 培养液的培养皿, 把组织块切割成1 mm ×1 mm ×1 mm 碎屑块, 并移入无菌锥型管，加入Hanks 缓冲液冲洗, 去除粘附于组织块上的细菌, 再以25 ml 37 ℃预热的DMEM 培养液冲洗碎屑1 次。随后将组织碎屑放入6 孔、35 mm 的Nunclon 细胞培养皿, 每孔4 ～ 5块组织碎屑，使组织块贴壁, 每孔注入4 ml DMEM 培养液, 小心置入37 ℃、5 %CO₂ 、95 %空气的细胞培养箱。一般2~3天就有细胞游离出来。

八、大鼠心肌细胞（酶消化法）

简述：新生SD大鼠，取心室肌，0.1%胰酶，35℃消化15min，收取上清，重复这一步骤4-5次。前两次以血红细胞和成纤维类细胞为主，弃去，收取后几次的细胞，PBS洗涤后，L-DMDM培养基铺板，37℃ ，CO₂培养箱培养；1h后，将未贴壁的细胞已知新培养皿中继续培养；24h后冲洗换液；

九、人主动脉瓣膜间质细胞（酶消化法）

简述：取材后，冷的PBS清洗三遍，0.25%胰酶消化5分钟，用细胞刮刮去表面的内皮层，PBS冲洗后，将瓣膜剪碎成0.5~1mm³的小块，2g/ml IV型胶原酶37℃消化2小时；70μm滤网滤去瓣膜残渣，1500rom离心5分钟。HANKS缓冲液清洗一遍，离心沉淀后加入H-DMED（含10%FBS）,常规培养。

十、小鼠真皮成纤维细胞（植块法）

简述：小鼠脱颈处死后，75%乙醇浸泡5min，备皮，去背部皮肤约1cm²置于含双抗的PBS中，仔细剥离脂肪血管等多余组织，去除表皮，将真皮部分清洗后于培养皿内剪碎，加入适量胰酶，37℃消化1h；加入H-DMEM完全噢诶杨及终止反应，PBS清洗组织块后均匀铺于10cm培养皿内，加入5ml培养基放入培养箱内，24h后补充培养基至10ml，3-4天后可见有细胞游出。